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[标本处理] 全血流式一些问题

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发表于 2013-8-27 11:41:01 | 显示全部楼层 |阅读模式
悬赏1流星未解决
本人最近开始做流式,遇到一些问题,特来请教,先谢谢大家了~
1、50uL 全血加多少抗体合适,买了BD和Biolegend的抗体,BD的抗体基本上CD3,CD8等都要加20uL,个人觉得加多了太浪费,因为样本还要做单标调补偿,所以我只加了1uL,但是貌似效果不太好,柱状图显示的峰都不完整,阳性的也没有出来两个峰只是往右偏移了,有的单标的阳性率和三标样本的阳性率相差还蛮多的,比如PD1,单标的样本比例为17%,CD3,CD8,PD1三标样本PD1阳性率只有5%,是不是我样本处理的不好的缘故?所以想请教,50uL全血,三标样本和单标调补偿样本加几uL抗体合适

2、如果要测CD3,CD8,PD1,CTLA4四个指标,但我们的仪器一次最多只能检测三个比如CD3,CD8,PD1,那CTLA4要怎么检测,是单染CTLA4还是要三色标记CD3,CD8,CTLA4?必须要做单染调补偿吗,如果每次检测多份不同人的血标本,每份血标本都需要做单染调补偿吗,还是第一份做单染调补偿后,其他的就不用调了?
CD3-FITC,CD8-ECD,PD1-APC,CTLA4-PE

CD3

CD3
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 楼主| 发表于 2013-8-27 11:43:42 | 显示全部楼层
3、细胞洗脱液和Cell Staining Buffer说的是一种东西吗,自己配制的话用PBS可以吗,PBS里面需要加血清吗,还是要加BSA,具体浓度是多少呢
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发表于 2013-8-27 11:46:40 | 显示全部楼层
1、如果你要用50ul全血,那么至少半量还是需要的,尤其是象你买的全量20ul的话,血的体积可能还得减少。用1ul实在是太少了,出不来是正常的。
2、如果要测4个指标,CD3、CD8是都需要用来设门的,那么就需要做两管CD3、CD8、PD1;CD3、CD8、CTLA4。单染调补偿一批标本只需做一次即可,第一份调好基本上都差不多的。

另外,我看你的图,似乎你很严格地把荧光设置在10E1以内,这样没有必要,而且容易把很多细胞都调到坐标轴外,建议你把阴性峰调到靠近10E1的位置。
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 楼主| 发表于 2013-8-28 17:20:45 | 显示全部楼层

倪老师,你好,我想问一下,阴性峰像您说的调到靠近10E1的位置,是根据什么来判断呀,是看阴性峰的完整程度吗,是让阴性峰以完整的峰形出现在10E1附近是吗
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发表于 2013-8-28 20:43:57 | 显示全部楼层
虽然我现在没有涉及到做全血这一部分,但我用的Beckman和Biolegend的抗体,都是减半(10ul)来做的,效果和20ul没有什么差别。我做的样本是免疫细胞,希望可以帮到你。
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发表于 2013-8-28 21:21:35 | 显示全部楼层
liyi881228 发表于 2013-8-28 17:20
倪老师,你好,我想问一下,阴性峰像您说的调到靠近10E1的位置,是根据什么来判断呀,是看阴性峰的完整程 ...

就是让阴性部分曲线完整的呈现在0轴外即可,从你这个宽度看,我觉得要让阴性部分的曲线完全呈现出来,峰值这个位置可能会靠近10E1,所以这么说。
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发表于 2013-8-28 21:22:20 | 显示全部楼层
Helen 发表于 2013-8-28 20:43
虽然我现在没有涉及到做全血这一部分,但我用的Beckman和Biolegend的抗体,都是减半(10ul)来做的,效果和 ...

BD和BC的抗体我都用半量,一些效价高的(如CD138 PE等)甚至减至1/4。
但是楼主这个剂量减得太厉害了,至少得验证过跟全量差不多,才可放心减量。
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发表于 2013-9-2 22:18:19 | 显示全部楼层
倪老师说的没错,很多流式抗体是可以减半,甚至1/4来用的,无论品牌。但需要提前做过验证实验,发现没有区别才可以。楼主的量减的太猛了,做不出来很正常,建议提前做验证实验试一下。
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发表于 2013-9-5 18:09:25 | 显示全部楼层
3色?你用的是Calibur么?通道都是些什么?貌似你的荧光素用得不对啊。
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发表于 2013-9-9 11:41:39 | 显示全部楼层
抗体量一般用 0.5-2ug/百万个目标细胞吧 好像,按抗体浓度,计算用量
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