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[其它] 染过色的细胞不能及时上机检测,该如何保存?

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发表于 2016-11-29 18:38:19 | 显示全部楼层 |阅读模式
悬赏1流星未解决
因为流式细胞仪使用地人较多,经常遇到细胞染好色之后不能及时上机检测,该如何保存才能避免荧光减弱?用4%的缓冲甲醛溶液重悬细胞可以吗?

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发表于 2016-11-29 19:56:25 | 显示全部楼层
首先,尽量事先安排好工作,例如事先预约好时间,安排染色。
其次,如果确实被人家挤掉了,那么可以考虑用1%的多聚甲醛固定,但强烈建议事先对比过。

我们上周有一个标记好的标本,没有进行任何固定,获取完发现没有取好,等发现的时候已经第二天了,幸好样本还在,然而没有避光。只好抱着试试看的心态上机,结果发现荧光几乎无影响,分群依然良好。当然,我不是鼓励大家这么做,毕竟还是有很大风险的。只是想说明,有时候,流式标本实际上并没有我们想象的那样脆弱。
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 楼主| 发表于 2016-11-30 09:30:09 | 显示全部楼层
每次做之前都会预约时间,但是有时候到时间了别人做不完,可能就要多等一个多小时。我用4%的缓冲甲醛溶液固定后发现荧光信号比没有固定的要高一些,但不知道具体原因,毕竟也只是这样做过两次。是不是如果能在染完色的两个小时内测样就不用固定了?我用的是Alexa Fluor647染料。
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发表于 2016-11-30 20:11:20 | 显示全部楼层
实验猿 发表于 2016-11-30 09:30
每次做之前都会预约时间,但是有时候到时间了别人做不完,可能就要多等一个多小时。我用4%的缓冲甲醛溶液固 ...

是会高一点,可以将多聚甲醛浓度降到1%,会好一些。

如果2小时内检测,不需要固定,只要避光即可。
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 楼主| 发表于 2016-11-30 22:15:00 | 显示全部楼层
好的,谢谢倪老师!
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