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楼主: chujindong

PMBC提取的经验及问题讨论

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发表于 2011-3-14 08:55:46 | 显示全部楼层

好,非常欢迎这种实际性操作经验的分享。顶。

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发表于 2011-3-14 14:32:16 | 显示全部楼层
我曾经封过抽血7h后在来分离的,也能分出很清晰的白膜层,肉眼未能看见红细胞的掺杂
组织样本处理不好?流式中文网原研的魔滤®魔杵®套装,低成本解决,高质量收获
 楼主| 发表于 2011-3-14 19:56:25 | 显示全部楼层
回复 sugarswallow 的帖子
实话说,我也有一次分的是放了5个小时的血,分的很好,但也只有这一次放了这么长时间。多数情况下是新鲜血分的好,早上护士抽的血分得不好。

   
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发表于 2011-3-16 22:10:23 | 显示全部楼层
可能,在抽血的时候,血和抗凝剂充分混匀还是比较重要的,和水平放置的影响应该不是很大。血中的细胞密度有区分,红细胞和多核白细胞密度较大,为1.090左右,而淋巴细胞和单核细胞密度为1.075~1.090,血小板为1.030~1.035。为此利用一种密度介于1.075~1.092之间而近于等渗的溶液(如Ficoll分层液)做密度梯度离心,使一定密度的细胞按相应密度梯度分布,从而将各种血细胞加以分离。如果和抗凝剂混匀,垂直放置后有分层,可以直接弃掉底层的沉淀,取上层来分离,效果也不错的。
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发表于 2011-3-16 22:19:13 | 显示全部楼层
当然,如果条件允许,越新鲜的血样,越早处理,效果肯定是越好的。如果想处理的时间宽裕点,建议自己制备阿氏液(Alsever液)抗凝的瓶子。阿氏液中既含有枸橼酸钠抗凝剂,又含有细胞生存的营养,所以它既可做抗凝剂,又可做血细胞的保存液。
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发表于 2011-3-16 22:24:33 | 显示全部楼层
阿氏液(Alsever液),配方如下:
枸橼酸钠(Na3C6H5O7?5H2O) 0.80g
枸橼酸 0.0325g
葡萄糖 2.05g
氯化钠 0.42g
H2O 加至 100.00ml
混匀溶解后,114.3℃高压蒸汽灭菌10min备用。

点评

感谢分享  发表于 2011-3-17 08:10
组织样本处理不好?流式中文网原研的魔滤®魔杵®套装,低成本解决,高质量收获
 楼主| 发表于 2011-3-17 08:27:15 | 显示全部楼层
本帖最后由 chujindong 于 2011-3-17 08:41 编辑

回复 chy 的帖子
谢谢分享。我没有试过把血放一天做,可以尝试一下。我采血用的是临床上的采血管,不知是不是用来抽血常规的管子,但确实知道是肝素锂抗凝的。不知道你们做这个实验时是不是用的了下文提到的Alsever液?

   
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 楼主| 发表于 2011-3-17 08:31:57 | 显示全部楼层
回复 chy 的帖子
水平放置的道理我也不是很懂,而且水平放置一段时间后也会分层,只是不太明显。我看到有人用离心后的白膜做PBMC分离,你所说的我也想过,但是因为这样改变了全血的组成比例,我不太清楚稀释到什么程度,分离液需要用多少。不知你有没有经验可以分享一下。

   
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 楼主| 发表于 2011-3-17 08:39:51 | 显示全部楼层
当然,如果条件允许,越新鲜的血样,越早处理,效果肯定是越好的。如果想处理的时间宽裕点,建议自己制备阿 ...
chy 发表于 2011-3-16 22:19

我知道说明书上说取到血后用组织培养液稀释一下,可以保证72小时内T细胞B细胞计数值不会变化。还没试过

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 楼主| 发表于 2011-3-23 21:22:55 | 显示全部楼层
感谢各位战友!目前本人已掌握该技术。
感觉须特别注意以下三点:
1、采血后抗凝一定要充分,不立即处理时可将采血管水平放在摇床上轻摇;
2、所使用的稀释液、淋巴细胞分离液使用前均需充分复温;
3、视情况可将血液稀释倍数加大。
chy战友的意见已考虑,并做了对比观察,发现室温放置12小时确实可以做出来,细胞状态也可以。但由于只有一例对照研究,尚需进一步验证。另外,1640与全血混匀后放置12小时也是可以做出来的。

点评

非常感谢分享经验。  发表于 2011-3-23 21:29
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