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楼主: 可可菲

[标本处理] 胞内细胞因子检测问题

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发表于 2013-1-25 22:01:58 | 显示全部楼层
BD的盒子里是两瓶的
Kit components:
• Fixation/Permeabilization solution (125 ml)
• BD Perm/Wash™ buffer,

那个加粗的只是标题啊,下面的1,2,3,4里没有加破膜剂的步骤,只写了个加perm/wash buffer的
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发表于 2013-1-25 22:02:58 | 显示全部楼层
foxp3是要破核膜的,好像是更强的一点的,有两步。
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发表于 2013-1-25 22:03:55 | 显示全部楼层
倪老师,还想请教一下,空白对照的基础荧光阈值高了是怎么回事呢?
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发表于 2013-1-25 22:07:01 | 显示全部楼层
woodking 发表于 2013-1-25 22:01
BD的盒子里是两瓶的
Kit components:
• Fixation/Permeabilization solution (125 ml)

可能叫法不同吧,我觉得应该是第二个加粗的部分Perm/Wash™ Buffer。
关于foxP3核内标记,它和胞内的标记一样都是两步,但它的第二步要复杂一些,破膜剂组成也不同。
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发表于 2013-1-25 22:11:42 | 显示全部楼层
可那只是个10×的buffer呀,真正起破膜作用的是那个Fixation/Permeabilization solution。

倪老师,空白对照的基础荧光太高该怎么办?老师说洗的不够,我很困惑,这里面啥抗体都没加,再洗有用吗?
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发表于 2013-1-25 22:22:01 | 显示全部楼层
woodking 发表于 2013-1-25 22:11
可那只是个10×的buffer呀,真正起破膜作用的是那个Fixation/Permeabilization solution。

倪老师,空白对 ...

空白对照的荧光太高有可能跟你细胞状态或细胞本身有关,空白对照我觉得没有必要设置吧。象你如果要做CD4、CD3、IL-17,那么就直接用CD4、CD3这个FMO对照(即扣掉一个荧光参数)来设置IL-17的maker。
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发表于 2013-1-25 22:30:29 | 显示全部楼层
woodking 发表于 2013-1-25 22:11
可那只是个10×的buffer呀,真正起破膜作用的是那个Fixation/Permeabilization solution。

倪老师,空白对 ...

Fixation/Permeabilization solution是什么成份查不到,可能有一定的破膜成份,但看了Perm/Wash Buffer的说明书之后(BD Perm/Wash buffer consists of 100 ml of concentrated stock solution (10X) containing both Fetal Bovine Serum (FBS) and saponin)真正起破膜作用的我认为是它,因为其中的皂素就是最经典的破膜成份。
http://www.bdbiosciences.com/ext ... d/2091KZ_554723.pdf
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发表于 2013-1-25 22:36:13 | 显示全部楼层
那放在这个buffer里过夜的话,破膜的时间是不是太长了啊?
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发表于 2013-1-25 23:44:41 来自手机 | 显示全部楼层
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发表于 2013-1-26 10:47:04 | 显示全部楼层
bd的说明书上是如果要间隔一段时间再染色的话用4%多聚甲醛4度10-20分钟,staining buffer洗涤两次后,用staining buffer重悬保存。
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